Все госты и снипы онлайн

Более 10000 документов в открытом доступе, абсолютно бесплатно

ГОСТ ISO/TS - 21872-2-2013 Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Горизонтальный метод обнаружения потенциально энтеропатогенных Vibrio spp. Часть 2. Обнаружение видов бактерий, отличных от Vibrio parahaemoliticus и Vibrio cholerae

Этот документ был распознан автоматически. В блоке справа Вы можете найти скан-копию. Мы работаем над ручным распознаванием документов, однако это титанический труд и на него уходит очень много времени. Если Вы хотите помочь нам и ускорить обработку документов, Вы всегда можете сделать это, пожертвовав нам небольшую сумму денег.

Файлы для печати:

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СОВЕТ ПО СТАНДАРТИЗАЦИИ. МЕТРОЛОГИИ И СЕРТИФИКАЦИИ (МГС) INTERSTATE COUNCIL FOR STANDARDIZATION. METROLOGY AND CERTIFICATION (ISC) ГОСТМ Е Ж Г О С У Д А Р С Т В Е Н Н Ы ЙС Т А Н Д А Р Т ISO/TS 21872-2— 2013 МИКРОБИОЛОГИЯ ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТОВ И КОРМОВ д л я ж и в о т н ы хГоризонтальный метод обнаружения потенциальноэнтеропатогенных Vibrio spp. Ч а с т ь 2Обнаружение видов бактерий, отличныхот Vibrio parahaemoliticus и Vibrio cholerae(ISO/TS 21872-2:2007, IDT) Издание оф ициальное Москва Стандартинформ 2014скатерть с кружевом
ГОСТ ISOTTS 21872-2—2013Предисловие Цели, основные принципы и основной порядок проведения работ по межгосударственной стан­ дартизации установлены ГОСТ 1.0-92 «Межгосударственная система стандартизации. Основные по­ ложения» и ГОСТ 1.2-2009 «Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосудар­ ственные. правила и рекомендации по межгосударственной стандартизации. Правила разработки, принятия, применения, обновления и отмены»Сведения о стандарте 1 ПОДГОТОВЛЕН Государственным научным учреждением Всероссийским научноисследовательским институтом консервной и овощесушильной промышленности Российской акаде­ мии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИКОП Россельхозакадемии) 2 ВНЕСЕН Федеральным агентством по техническому регулированию и метрологии (ТК 335) 3 ПРИНЯТ Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (про­ токол от 27 декабря 2013 г. No 63-П) За принятие проголосовали: Краткое наименование страны Коя страны по Сокращенное наименование национального по МК(ИСО 3166) 004-97 МК<ИСО 3166)004-97 органа по стандартизации Армения AM Минэкономики Республики Армения Беларусь BY Госстандарт Республики Беларусь Казахстан КZ Госстандарт Республики Казахстан Киргизия KG Кыргызстандарт Молдова MD Моддова-Стандарт Россия RU Росстандарт Таджикистан TJ Таджикстандарт 4 Настоящий стандарт идентичен международному документу ISO/TS 21872-2:2007 Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal method for the detection of potentially enteropathogenic Vib­ rio spp. — Part 2: Detection of species other than Vibrio parahaemolyticus and Vibrio cholerae (Микробио­ логия пищевых продуктов и кормов для животных. Горизонтальный метод обнаружения потенциально энтеропатогенных видов рода Vibrio. Часть 2: Выявление видов, отличных от Vibrio parahaemolyticus и Vibrio cholerae). Международный документ разработан подкомитетом ISO/ТС 34/SC 9 «Микробиология» Техни­ ческого комитета по стандартизации ISO/TC 34 «Пищевые продукты» Международной организации по стандартизации (ISO). Перевод с английского языка (еп). Официальный экземпляр международного документа, на основе которого подготовлен настоя­ щий межгосударственный стандарт, имеется в Федеральном агентство по техническому регулирова­ нию и метрологии Российской Федерации.
ГОСТ ISO/TS 21872-2— 2013 Сведения о соответствии межгосударственных стандартов ссылочным международным стан­ дартам приведены в дополнительном приложении ДА. Степень соответствия — идентичная (ЮТ) 5 Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 17 марта 2014 г. N9 158-ст межгосударственный стандарт ГОСТ ISO/TS 21872-2-2013 введен в действие в ка­ честве национального стандарта Российской Федерации с 1 июля 2015 г. 6 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕИнформация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодном информаци­онном указателе «Национальные стандарты», а текст изменений и поправок — в ежемесячноминформационном указателе «Национальные стандарты». В случав пересмотра (замены) или от­мены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ежемесяч­ном информационном указателе «Национальные стандарты». Соответствующая информация,уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования — наофициальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет© Стандартинформ. 2014 В Российской Федерации настоящий стандарт не может быть полностью или частично воспро­ изведен. тиражирован и распространен в качестве официального издания без разрешения Феде­ рального агентства по техническому регулированию и метрологии III
ГОСТ ISOTTS 21872-2—2013Содержание Сведения о стандарте............................................................................................................................................ II 1 Область применения........................................................................................................................................... 1 2 Нормативные ссы лки................................................................................... 1 3 Термины и определения.................................................................. 2 4 Сущность метода................................................................................................................................................. 2 4.1 Общие положения........................................................................................................................................2 4.2 Первичное обогащение в жидкой селективной среде...........................................................................2 4.3 Вторичное обогащение в жидкой селективной среде............................................................................2 4.4 Выделение и идентификация..................................................................................................................... 3 4.5 Подтверждение.............................................................................................................................................3 5 Реактивы и среды................................................................................................................................................ 3 6 Аппаратура и материалы................................................................................................................................... 4 7 Отбор проб........................................................................................................................................................... 4 8 Приготовление испытуемой пробы...................................................................................................................4 9 Процедура проведения испытания (см. приложение А )............................................................................... 4 9.1 Проба для испытания и исходная суспензия...........................................................................................4 9.2 Первичное селективное обогащение....................................................................................................... 4 9.3 Вторичное селективное обогащение........................................................................................................ 5 9.4 Выделение и идентификация.....................................................................................................................5 9.5 Подтверждение.............................................................................................................................................5 10 Выражение результатов............................................................................................... 9 11 Протокол испытаний..........................................................................................................................................9 Приложение А (обязательное) Схема проведения испытания....................................................................10 Приложение В (обязательное) Состав и приготовление питательных сред и реактивов........................ 11 Приложение ДА (справочное) Сведения о соответствии межгосударственных стандартов ссылочным международным стандартам............................................................................. 17 Библиография........................................................................................................................................................18IV
ГОСТ ISO/TS 21872-2—2013 М Е Ж Г О С У Д А Р С Т В Е Н Н Ы Й С Т А Н Д А Р Т МИКРОБИОЛОГИЯ ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТОВ И КОРМОВ ДЛЯ ЖИВОТНЫХ Горизонтальны й метод обнаружения потенциально энтеропатогенных vibrio spp. часть 2 Обнаружение видов бактерий, отличны х от V ibrio parahaem oliticus и V ibrio cholerae Microbiology o f food and animal feeding stuffs. Horizontal method for the detection of potentially enteropathogenic V ibrio spp. Part 2. Detection of species other than Vibrio parahaemolyticus and Vibrio cholerae Дата введения — 2015—07—01 ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ — Для гарантии здоровья лабораторного персонала необходимо, чтобы испы тания для вы явления V ibrio spp. и особенно токсигенного V ibrio cholerae проводи­ л и сь только в лабораториях, специально оснащенных для этих целей и под руководством опы тного микробиолога и чтобы уделялось особое внимание обеззараживанию зараженного материала.1 Область применения Настоящий стандарт распространяется на пищевые продукты и корма для животных и устанав­ ливает горизонтальный метод для выявления энтеропатогенных видов Vibrio, вызывающих заболева­ ния в или через кишечный тракт, отличных от Vibrio parahaemolyticus и Vibrio cholerae. Виды, выявля­ емые указанным методом, включают Vibrio fluvialis. Vibrio mimicus и Vibrio vulnificus (см. 9.4.4). Этот метод не подходит для выделения Vibrio hollisae. Виды Vibrio parahaemolyticus и Vibrio cholerae могут быть также выделены в процессе применения данного метода. Данный метод не предназначен для выявления Vibrio metschnikovii. так как он оксидазоотрицателен. Метод применим также для выявления данных микроорганизмов в объектах окружающей среды в сфере пищевого производства и оборота пищевых продуктов. П р и м е ч а н и е 1 — Vibrio metschnikovii иногда выявляют из образцов фекалий человека, он может вызывать расстройство желудка. П р и м е ч а н и е 2 — Идентификация видов Vibrio, отличных от Vibrio parahaemolyticus и Vibrio cholerae. сложна и требует дальнейшего развития. Биохимические тесты, приведенные в настоящем стандарте, дают возможность предположительного подтверждения этих видов.2 Нормативные ссылки В настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие стандарты: ISO 6887-1 Microbiology of food and animal feeding stuffs — Preparation of test samples, initial sus­ pension and decimal dilutions for microbiological examination — Part 1: General rules for the preparation of the initial suspension and decimal dilutions (Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Приготовление проб для испытаний, исходных суспензий и десятичных разведений для микробиоло­ гических исследований. Часть 1. Общие правила приготовления исходной суспензии и десятичных разведений) Издание официальное 1
ГОСТ ISOfTS 21872-2—2013 ISO 6887-2 Microbiology of food and animal feeding stuffs - Preparation of test samples, initial sus­ pension and decimal dilutions for microbiological examination — Part 2: Specific rules for the preparation of meat and meat products (Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Подготовка проб, исходной суспензии и десятикратных разведений для микробиологических исследований. Часть 2. Специальные правила подготовки мяса и мясных продуктов) ISO 6887-3 Microbiology of food and animal feeding stuffs - Preparation of test samples, initial sus­ pension and decimal dilutions for microbiological examination — Part 3: Specific rules for the preparation of fish and fishery products (Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Приготовление проб для испытаний, исходных суспензий и десятичных разведений для микробиологических иссле­ дований. Часть 3. Специальные правила для приготовления рыбы и рыбных продуктов) ISO 6887-4 Microbiology of food and animal feeding stuffs - Preparation of test samples, initial sus­ pension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 4: Specific rules for the preparation of products other than milk and milk products, meat and meat products, and fish and fishery products (Микро­ биология пищевых продуктов и кормов для животных. Приготовление проб для испытаний, исходных суспензий и десятичных разведений для микробиологических исследований. Часть 4. Специальные правила для приготовления продуктов, кроме молока и молочных продуктов, мяса и мясных продук­ тов и рыбы и рыбопродуктов) ISO 7218 Microbiology of food and animal feeding stuffs - General requirements and guidance for mi­ crobiological examinations (Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Общие требо­ вания и рекомендации по микробиологическим исследованиям) ISO 8261 Milk and milk products. General guidance for the preparation of tests samples, initial suspensions and decimal dilutions for microbiological examination (Молоко и молочные продукты — Об­ щие правила приготовления проб для испытаний, исходных суспензий и десятикратных разведений для микробиологических исследований)3 Термины и определения В настоящем стандарте применены следующие термины с соответствующими определениями: 3.1 потенциально энтеропатогенные V ibrio: Микроорганизмы, которые образуют типичные колонии на плотной селективной среде и обладают описанными биохимическими характеристиками при тестировании, проводимом в соответствии с настоящим стандартом. 3.2 обнаружение потенциально энтеропатогенных V ibrio: Определение присутствия или от­ сутствия предположительных, энтеропатогенных видов Vibrio в определенном количестве продукта, после проведения испытания в соответствии с настоящим стандартом.4 Сущность метода 4.1 Общие положения Метод обнаружения потенциально энтеропатогенных Vibrio spp. состоит из четырех последова­ тельных этапов (см. приложение А). П р и м е ч а н и е — Vibrio могут присутствовать в небольших количествах, часто вместе с гораздо большим количеством других микроорганизмов, относящихся к семейству Vibrionaceae или другим семействам, поэтому необходимы два последовательных обогащения для выявления этих микроорганизмов. 4.2 Первичное обогащение в ж идкой селективной среде Среду для обогащения (щелочную солевую лептонную воду. ASPW) (5.1) инокулируют пробой при комнатной температуре. Инкубируют при 37 °С в течение (6 ± 1) ч. В случае больших количеств высеваемого продукта ASPW следует нагреть до 37 °С перед вне­ сением пробы. 4.3 Вторичное обогащение в жидкой селективной среде Среду для обогащения (ASPW) инокулируют культурой, полученной по 4.2. Инкубируют при температуре 37 °С в течение (18 ± 1) ч. 2
ГОСТ ISO/TS 21872-2— 2013 4.4 Выделение и идентификация Культуры, полученные по 4.2 и 4.3, пересевают на следующие две селективные агаризованные среды: - Тиосульфат-цитратный агар с сахарозой и желчью (TCBS); - другая подходящая агаризованиая селективная среда (остается на выбор лаборатории), такая как колистин полимиксин р-целлобиоза агар (СРС), натрия додецил сульфат, полимиксин В. сахароза агар (SDS) или модифицированный колистин полимиксин целлобиоза агар (тСРС). Две среды для выделения инкубируют при 37 °С в течение {24 ± 3) ч. 4.5 Подтверждение Характерные колонии Vibrio spp., выделенные по 4.4. пересевают и затем подтверждают с по­ мощью подходящих биохимических тестов.5 Реактивы и среды Информация об общепринятой лабораторной практике приведена в ISO 7218. П р и м е ч а н и е — В связи с большим количеством питательных сред и реагентов и для удобства пользования их состав и приготовление представлены в приложении В. 5.1 Среда для обогащения: щелочная солевая пептонная вода (ASPW) См. В.1. 5.2 А гаризованны е среды для выделения 5.2.1 Первая среда: тиосульфат, цитрат, желчная соль и сахароза (TCBS) агар См. В.2. 5.2.2 Вторая среда Выбирают между: a) натрия додецил сульфат полимиксин сахароза агар (SDS). см. В.З; b) целлобиоза полимиксин колистин агар (CPC), см. В.4; c) модифицированный целлобиоза полимиксин колистин агар (тСРС), см. В.5. 5.3 Солевой питательный агар (SNA) См. В.6. 5.4 Реактив для определения оксидазы См. В.7. 5.5 Солевой трехсахарный железистый (TSA) агар См. В.8. 5.6 Солевая среда для определения орнитин декарбоксилазы (ODC) См. В.9. 5.7 Солевая среда для определения лизин декарбоксилазы (LDC) См. В.10. 5.8 Солевая среда для определения аргинин дегидролазы (ADH) См. В.11. 5.9 Реактив для определения Р-галактозидазы См. В.12. 5.10 Солевая среда для определения индола См. В.13. 5.11 Солевые пептонные воды См. В.14. 5.12 Раствор хлорида натрия См. В. 15. 3
ГОСТ ISOTTS 21872-2—20136 Аппаратура и материалы П р и м е ч а н и е — Инструменты одноразового применения — приемлемая альтернатива стеклянной посуде многократного пользования, если они имеют подходящие технические характеристики. Используют оборудование обычной микробиологической лаборатории (см. ISO 7218) и, в част­ ности. следующее. 6.1 Термостат, регулируемый до (37 ± 1) °С. 6.2 Термостаты или водяные бани, регулируемые до (41,5 ± 1) °С. 6.3 Водяная баня, регулируемая от 44 до 47 °С. 6.4 Водяная баня, регулируемая до (37 ± 1) °С. Рекомендуется использовать водяные бани (6.2, 6.3 и 6.4), содержащие антибактериальный агент.7 Отбор проб В лабораторию необходимо доставить представительную пробу, не поврежденную и не изме­ ненную в ходе транспортирования или хранения. Отбор проб не является частью метода, установленного в настоящем стандарте. Отбор проб — по стандарту на конкретный продукт. В случае отсутствия конкретного стандарта на отбор проб про­ дукта рекомендуется, чтобы заинтересованные стороны достигли согласия по процедуре отбора проб.8 Приготовление испытуемой пробы Пробу для испытания готовят в соответствии с определенной частью ISO 6887 и/или ISO 8261 или стандарту на конкретный продукт. В случае отсутствия конкретного стандарта рекомендуется, чтобы заинтересованные стороны достигли согласия по данному вопросу. 9 Процедура проведения испытания (см. приложение А) 9.1 Проба для испы тания и исходная суспензия Для приготовления исходной суспензии используют первую среду для обогащения (ASPW), ука­ занную в 5.1. Берут пробу для испытания (х г или х см3) в соответствии с нормативным значением и гомогени­ зируют ее в 9х см3 (или 9х г) среды для обогащения. В случае больших количеств высеваемого продукта перед внесением пробы ASPW должна быть нагрета до 37 °С. Если разведение и инкубирование не могут быть проведены в тот же день, исходную суспензию хранят до следующего дня при температуре (5 ± 3) °С. Когда более чем одна проба массой 25 г испытывается от той же партии анализируемого про­ дукта, то для уменьшения объема проводимой работы эти пробы могут быть объединены. При этом должна быть уверенность в том. что смесь (собранные вместе пробы) не изменят результаты для ис­ пытуемого продукта.П р и м е рЕ с л и а н а л и з и р у ю т 10 п р о б д л я и с п ы т а н и я п о 2 5 а. в о з м о ж н о о б ъ е д и н и т ь э т и 10п р о б , д л я т о г о , ч т о б ы п о л у ч и т ь в с у м м е о б ъ е д и н е н н у ю п р о б у м а с с о й 250 г и д о б а в и т ь к н е й 2 ,2 5 д м 3с р е д ы д л я о б о г а щ е н и я . Количество клеток потенциально энтеропатогенных Vibrio spp. значительно снижается за счет хранения при низких температурах. Хранение образцов и в меньшей степени суспензий при таких температурах должно быть устранено или сведено к минимуму. 9.2 Первичное селективное обогащение Инкубируют исходную суспензию (9.1) при температуре 37 °С в течение (6 ± 1) ч. 4
ГОСТ ISO/TS 21872-2— 2013 Необходимо обращать особое внимание на применение метода для продуктов с высоким со­ держанием соли, так как конечная концентрация соли в среде может изменять ее качественные ха­ рактеристики (см. ИСО 6887-4). 9.3 Вторичное селективное обогащение 9.3.1 Переносят 1 см3 культуры, полученной по 9.2. взятой с поверхности, в пробирку, содержа­ щую 10 c m j ASPW (5.1). 9.3.2 Посевы на ASPW инкубируют при (37 ± 1) °С в течение (18 ± 1) ч. 9.4 Выделение и идентификация 9.4.1 Из культур, выросших на среде ASPW (9.2 и 9.3.2) засевают петлей поверхность чашек с TCBS агаром (5.2.1) таким образом, чтобы получить развитие хорошо изолированных колоний. Аналогично поступают со второй селективной средой (5.2), используя новую петлю. 9.4.2 Переворачивают чашки с агаром (9.4.1) и помещают их в термостат (6.1). установленный на 37 °С. 9.4.3 После инкубирования в течение (24 ± 3) ч просматривают чашки (9.4.1 и 9.4.2) на наличие типичных колоний Vibrio spp. Отмечают их расположение на основании чашки. Существует две основные морфологические характеристики для колоний Vibrio spp. на TCBS агаре (5.2.1): - типичные колонии V. mimicus и V. vulnificus гладкие зеленые (сахарозоотрицательные), от 2 до 3 мм в диаметре; - типичные колонии V. fluvialis гладкие, желтые (сахарозоположительные). от 2 до 3 мм в диа­ метре. П р и м е ч а н и е — V. parahaerrralyticus и V. cholerae образуют зеленые и желтые колонии на TCBS ага­ ре соответственно. Существует две основные морфологические характеристики для колоний Vibrio spp. на SDS среде (5.2.2 а)): - типичные колонии V. mimicus и V. vulnificus фиолетовые и достигают 2 мм или более в диамет­ ре. с темным кольцом; - типичные колонии V. cholerae 01 желтые, 2 мм или более в диаметре, с темным кольцом; V. cholerae. не относящиеся к штамму 0 1 . могут не образовывать темное кольцо. Другие Vibrio spp. либо не будут расти на SDS агаре, либо образовывать колонии без кольца. Существует две основные морфологические характеристики для колоний Vibrio spp. на CPC и mCPC среде [5.2.2 b) и с)): - типичные колонии V. vulnificus желтые. 2 мм или более в диаметре и окружены желтой зоной; - типичные колонии V. cholerae фиолетовые. 2 мм или более в диаметре и окружены голубым кольцом. Некоторые виды других Vibrio spp. могут расти на СРС или mCPC агарах; выросшие колонии по­ добны описанным выше. 9.4.4 Для выделения V. vulnifivus следует обращать внимание на качество среды СРС или mCPC. 9.5 Подтверждение 9.5.1 Для идентификации Vibrio до вида могут быть использованы разнообразные коммерчески доступные наборы для биохимической идентификации, обеспеченные базой данных или идентифи­ кационными таблицами. Наборы ииокулируются суспензией определяемых бактерий. Суспензии для инокуляции готовятся в физиологическом растворе или жидкости для разбавления. Наборы для био­ химической идентификации основаны на реакциях, полученных при использовании сред, подобных тем. которые описаны в настоящем стандарте. П р и м е ч а н и е — Распознавание колоний Vibrio — в значительной степени вопрос опыта, их внешний вид может иногда различаться не только от вида, но также от партии питательной среды. 5
ГОСТ ISOTTS 21872-2—2013 9.5.2 Отбор колоний для подтверждения и приготовления чисты х культур Для подтверждения пересевают с каждой селективной среды (см. 9.4) пять колоний, которые считаются типичными для каждого потенциально патогенного вида Vibrio spp. Если на чашке менее пяти типичных колоний, то пересевают все эти колонии. П р и м е ч а н и е — Пищевые продукты, особенно морепродукты, могут содержать большое число бак­ терий. включая непатогенные Vibrio spp., которые могут расти в процессе культивирования на селективных сре­ дах. Пересев малого количества колоний может привести к потере потенциально патогенных видов. Пересевают отобранные колонии на поверхность чашек с солевым питательным агаром или по­ верхность скошенного солевого питательного агара (5.3) для получения изолированных колоний. По­ севы (9.4.2) инкубируют при 37 °С в течение (24 ± 3) ч. Для биохимического подтверждения используют чистые культуры. 9.5.3 Тесты для идентификации 9.5.3.1 Тест на оксидазу Используя платиново-иридиевую петлю или стеклянный стержень, берут часть чистой культуры с солевого питательного агара (9.5.2) и проводят по поверхности фильтровальной бумаги, увлажнен­ ной реактивом на оксидазу (5.4), или используют коммерческие доступные тесты, следуя инструкциям производителя. Не следует использовать ни никель-хромовую петлю для отбора, ни металлический провод. Тест считается положительным, если цвет меняется на розовато-лиловый, фиолетовый или насыщенный фиолетовый в течение 10 с. 9.5.3.2 Микроскопирование Каждую чистую культуру, полученную по 9.4.2, тестируют в соответствии с а) и Ь): a) Готовят мазок для окраски по Граму (см. ISO 7218). После окраски, используя микроскоп, от­ мечают морфологию и отношение к окраске по Граму и записывают результаты. b ) Инокулируют пробирку с щелочной солевой пептонной водой (ASPW) (5.1). Посевы инкубиру­ ют при (37 ± 1) °С от 1 ч до 6 ч. Наносят каплю культуры на чистую поверхность предметного стекла, накрывают покровным стеклом и проверяют подвижность под микроскопом. Отбирают культуры, по­ казывающие положительный результат на подвижность. 9.5.3.3 Отбор культур для биохимических тестов Отбирают для биохимического подтверждения оксидазололожительные, грамотрицательные культуры, которые показывают положительный результат в тесте на подвижность. 9.5.4 Биохимическое подтверждение 9.5.4.1 Используя петлю для посевов, инокулируют среды, указанные в Э.5.4.2 — Э.5.4.8. каждой культурой, полученной из колоний, отобранных по 9.5.3.3. 9.5 4.2 Тест с солевым TSI агаром (5.5) Инокулируют укалыванием основание столбика агара и проводят вдоль по скошенной поверхно­ сти. Посевы инкубируют при (37 ± 1) °С в течение (24 ± 3) ч. Результаты интерпретируют следующим образом: a) Основание агаризованной среды - желтый: глюкозоположительный (ферментация глюкозы); - красный или неизменившийся: глюкозоотрицательный (нет ферментации глюкозы): - черный: образование сероводорода; - пузыри или трещины: образование газа из глюкозы. b ) Скошенная поверхность агаризованной среды - желтый: лактозо и/или сахарозо-положительный (ферментация лактозы и/или сахарозы): - красный или неизменившийся: лактозо и сахарозо-отрицательный (нет ферментации лактозы или сахарозы). Типичные реакции V. vulnificus и V. fluvialis соответствуют кислотной поверхности (желтый) и кислотному основанию (желтый), без образования сероводорода или газа. Типичные реакции V. mimicus соотвестеуют щелочной поверхности (красный) (иногда кислотной: желтый) и кислому основанию (желтый) без образования сероводорода или газа. 9.5.4.3 Выявление орнитин декарбоксилазы Инокулируют жидкую солевую среду (5.7) чуть ниже поверхности. Добавляют около 1 см1 сте­ рильного минерального масла на поверхность среды. Посевы инкубируют при температуре 37 °С в течение(24 ± 3 ) ч. 6
ГОСТ ISO/TS 21872-2— 2013 Помутнение и фиолетовый цвет среды после инкубирования указывают на положительную ре­ акцию (бактериальный рост и декарбоксилирование орнитина). Желтый цвет указывает на отрица­ тельную реакцию. 3.5.4.4 Выявление L-лизин декарбоксилазы Инокулируют жидкую солевую среду (5.7) чуть ниже поверхности. Добавляют около 1 см3 сте­ рильного минерального масла на поверхность среды. Посевы инкубируют при температуре (37 ± 1) °С в течение (24 ± 3) ч. Помутнение и фиолетовый цвет среды после инкубирования указывают на положительную ре­ акцию (бактериальный рост и декарбоксилирование лизина). Желтый цвет указывает на отрицатель­ ную реакцию. 9.5.4.5 Выявление аргинин дигидролазы Инокулируют жидкую солевую среду (5.8) чуть ниже поверхности. Добавьте около 1 см3 сте­ рильного минерального масла на поверхность среды. Посевы инкубируют при температуре (37±1) °С в течение (24 ± 3) ч. Помутнение и фиолетовый цвет среды после инкубирования указывают на положительную ре­ акцию (бактериальный рост и дигидрирование аргинина). Желтый цвет указывает на отрицательную реакцию. 3.5.4.6 Выявление (5-галактозидазы Инокулируют подозрительную колонию в пробирку, содержащую 0.25 см1 солевого раствора (5.12). Добавляют одну каплю толуола и встряхивают пробирку. Помещают пробирку в водяную баню (6.4), установленную на 37 °С и оставляют приблизительно на 5 мин. Добавляют 0,25 см 1 реактива для определения р-галактозидазы (5.9) и перемешивают. Возвра­ щают пробирку в водяную баню, установленную на 37 °С. оставляют ее на (24 ± 3) ч, просматривая время от времени. Желтый цвет указывает на положительную реакцию (присутствие Р-галактозидазы). Часто реак­ ция видна через 20 мин. Отсутствие окрашивания через 24 ч указывает на отрицательную реакцию. Если используются диски, готовые к применению, то следуют инструкциям производителя. 9.5.4.7 Определение индола Подозрительную колонию высевают в пробирку с 5 см3 трилтон-триптофановой солевой среды (5.10). Посевы инкубируют при температуре 37 °С в течение (24 ± 3) ч. После икубирования добавля­ ют 1 см3 реактива Ковача. Образование красного кольца указывает на положительную реакцию (образование индола). Жолто-коричневое кольцо указывает на отрицательную реакцию. 9.5.4.8 Тест на солеустойчивость Готовят серию сред с пептонной водой с возрастающей концентрацией соли (NaCI): 0, 2 .4 , 6. 8 и 10% (5.11). Готовят суспензию из колоний, которые будут тестироваться, и с помощью петли засевают каж­ дую из пробирок. Посевы инкубируют при температуре 37 °С в течение (24 ± 3) ч. Появление мутности в посевах указывает на то. что подозреваемая колония может расти при концентрации хлорида натрия, существующей в пробирке с солевой пептонной водой. 9.5.4.9 Интерпретация биохимических тестов Виды потенциально энтеропатогенных Vibrio spp. в основном дают реакции, представленные в таблице 1. Реакции для V. parahaemolyticus и V. choterae также представлены, так как они могут быть выделены а процессе применения процедур, приведенных в настоящем стандарте. Реакции для V. hollisae не представлены, так как этот вид не будет выявлен. 7
ГОСТ ISCVTS 21872-2—2013 Т а б л и ц а 1 — Интерпретация биохимических тестов Тесты V. cholerae* V. mimicus * V. parahaemolyticus* V. vulnificus * V. fluvials * Оксидаза + ♦ + + ♦ Выделение газа (глю- - - - - - зоза) Лактоза - - - + - Сахароза + - - - ♦ ODC + + + + - LDC + + + + - ADH - - - - ♦ ONPG гидролиз + + - + ♦ Образование индола + + + + h Рост в пептонной воде с: 0 % NaCI + + 2 % NaCI + + + + ♦ 6 % NaCI - - + + 8 % NaCI- - + - - 10% NaCI~ - - - - * Знак «+» означает от 76% до 89% положительных реакций. 6 Изменчивые результаты П р и м е ч а н и е — Реакции, приведенные в таблице 1, — руководство по идентификации перечислен­ ных видов. Требуются дополнительные фенотипические тесты для полного различения этих видов друг от друга, от других непатогенных видов Vibrio и других ферментативных грамотрицательных организмов, таких как Аег- omonas spp. 9.5.4.10 Пошаговое подтверждение (по желанию) С культурами, отобранными по 9.5.3.3, проводят тесты на рост в 10 %-ной солевой пептонной воде (5.11). Затем проводят подтверждение (другие тесты) с культурами, которые не показали рост в 10 %-ной солевой пептонной воде. П р и м е ч а н и е — Желательно параллельно проводить пересев либо в 2 %-ную солевую пептонную воду, либо на солевой питательный агар, для того, чтобы быть уверенным, что «отсутствие роста» в 10 %-ной солевой пептонной воде не вызвано гибелью культуры. 9.5.5 Подтверждение биохим ической идентификации и определение факторов патогенности Биохимическая идентификация Vibrio затруднена, и предпочтительно для получения подтвер­ ждения идентификации изолированных колоний, считаемых потенциально энтеропатогенными вида­ ми Vibrio, посылать их в специализированную лабораторию. Для транспортирования пересевают культуры на поверхность скошенного солевого питательно­ го агара (5.3). 8
ГОСТ ISO/TS 21872-2— 201310 Выражение результатов В зависимости от результатов интерпретации указывают присутствие или отсутствие потенци­ ально энтеропатогенных Vibrio spp. в пробе для испытания х г или х см3 продукта (см. ISO 7218). ука­ зав название соответствующих бактериальных видов.11 Протокол испытаний Протокол испытаний должен содержать: - всю информацию, необходимую для полной идентификации пробы; - используемый метод приготовления образцов, если известно: - любое отклонение в отношении среды для обогащения или использованных условий инкуби­ рования; - все рабочие детали, не установленные в этом стандарте, или рассматриваемые как дополни­ тельные, вместе с другими инцидентами, которые могли бы повлиять на результат испытаний; - полученные результаты. Также протокол испытаний должен содержать информацию, был ли получен положительный ре­ зультат при использовании только среды для изоляции, не указанной в настоящем стандарте. 9
ГОСТ ISOH-S 21872-2—2013 Приложение А (обязательное)Схема проведения испытания ю
ГОСТ ISO/TS 21872-2—2013 Приложение В (обязательное)Состав и приготовление питательных сред и реактивов B.1 Щелочная солевая пептонная вода (ASPW) В.1.1 Состав: пептон — 20.0 г; натрия хлорид — 20.0 г; вода — 1 000 см3 В.1.2 Приготовление Растворяют компоненты в воде, нагревая при необходимости. Если необходимо, регулируют pH так. чтобы после стерилизации он был 8.6 ± 0.2 при 25 *С. Разливают среду в пробирки или колбы подходящего объема, чтобы получить порции, в количествах, тре­ буемых для анализа (см. 9.1 и 9.3.1). Стерилизуют в автоклаве 15 мин при 121 °С. В.2 Тиосульфат-цитратный желчный и сахарозный (TCBS) агар В.2.1 Состав: пептон — 10,0 г; дрожжевой экстракт — 5.0 г; цитрат натрия — 10.0 г. тиосульфат натрия — 10,0 г; цитрат железа (iii) — 1.0 г; натрия хлорид- 10.0 г; сухая бычья желчь — 8.0 г; сахароза — 20.0 г; бром тимоловый голубой — 0,04 г; тимоловый голубой — 0.04 г; агар — 8.0-18.0 г” вода — 1000 см5. В.2.2 Приготовление Растворяют компоненты или дегидратированную основу в воде доведением до кипения. Если необходимо, регулируют pH так. чтобы он составлял 8.6 ± 0.2 при 25 "С. Не автоклавируют. В.2.3 Приготовление чашек с агаром Разливают в чашки Петри по 15 — 20 см5 свежеприготовленной среды, охлажденной приблизительно до 50 °С и оставляют для застывания. Непосредственно перед использованием тщательно подсушивают поверхность агара (предпочтительнее после снятия крышек и переворачивания чашек). В.2.4 Контроль среды Для руководства см. (1). (2]. Для количественной оценки эффективности роста для каждой партии TCBS агара, используют солевой пи­ тательный агар (SNA) как сравнительную среду и следующие штаммы: - V. parahaemolyticus: NCTC 10885: - V. fumissii: NCTC 11218: - Escherichia coli: ATCC 25922. 8739 или 11775. Эффективность роста рассчитывают по формуле ГОСТ ISCVTS 21872-2—2013 В.З Натрий додецил сульфат полимиксин сахарозный (SDS) агар В.3.1 Основа среды В.3.1.1 Состав: протеозопептон — 10,0 г; мясной экстракт — 5.0 г; сахароза — 15,0 г; натрия хлорид — 20,0 г; натрий додецил сульфат — 1.0 г; бромтимолоеый голубой — 0.04 г; крезоловый красный — 0,04 г; агар— 15,00 г; дистиллированная вода — 1000 см1 В.З. 1.2 Приготовление Растворяют компоненты в воде. Устанавливают pH 7.6 ± 0,2 при 25 °С. Стерилизуют при 121 °С в течение 15 мин. В.3.2 Раствор полимиксина В В.3.2.1 Состав: Полимиксин В сульфат — 100000 единиц; Вода — 5 см1. В.3.2.2 Приготовление Растворяют компонент в воде. Стерилизуют фильтрацией. В.3.3 Приготовление готовой среды Охлаждают основу среды приблизительно до 50 иС и прибавляют 5 см! стерильного раствора полимиксина В. перемешивают. В.3.4 Приготовление чашек Петри с агаром Разливают в чашки Петри по 15 — 20 см1 агара. Выдерживают чашки до тех пор. пока поверхность агара не станет сухой. В.3.5 Контроль среды Для руководства см. [1], (2]. Для количественной оценки эффективности роста для каждой партии TCBS агара используют солевой пи­ тательный агар (SNA) как сравнительную среду и следующие штаммы: - V.vulnificus: NCTC 11067 (АТСС 29307); - V.cholerae: NCTC 8042 (АТСС 14733); - Escherichia coli: АТСС 25922, 8739 или 11775. Эффективность роста рассчитывают по формуле (Nsds/ Nsfit,) ■ 100, где N — количество выросших колоний. Эффективность роста должна составлять по меньшей мере 50 % для любых видов Vibrio и менее 1 % для Е. coli. Колонии V. vulnificus: NCTC 11067 должны быть пурпуро-зелеными с непрозрачными зонами, а V. cholerae: NCTC 8042 — желтыми с непрозрачными зонами. В.4 Целлобиозо-полимиксин-колистин (СРС) агар В.4.1 Раствор 1 В.4.1.1 Состав бактериологический пептон — 10,0 п мясной экстракт — 5,0 n цитрат железа — 0.1 г; натрия хлорид — 20,0 г; бромтимолоеый голубой — 0.04 г; крезоловый красный — 0.04 г; агар — 15,0 г; дистиллированная вода — 900 сма. В.4.1.2 Приготовление Растворяют компоненты в воде. Устанавливают pH 7.6 ± 0.2. Автоклавируют при 121 *С в течение 15 мин. Охлаждают приблизительно до 50 аС. В.4.2 Раствор 2 В .4.2.1 Состав: целлобиоза — 15,0 г; колистин — 1360000 единиц: полимиксин В — 100000 единиц; дистиллированная вода — 100 см1. 12
ГОСТ ISO/TS 21872-2—2013 В.4.2.2 Приготовление Растворяют целлобиозу в дистиллированной воде при нагревании. Охлаждают и прибавляют антибиотики, стерилизуют фильтрацией. В.4.3 Готовая среда Прибавляют раствор 2 (100 см3) к раствору 1 (900 см3) и перемешивают. В.4.4 Приготовление чашек с агаром. Вносят в чашку Петри 15 — 20 см3 среды. Подсушивают поверхность агара перед использованием. В.4.5 Контроль среды Для руководства см. [1]. (2]. Для количественной оценки эффективности роста для каждой партии TCBS агара используют солевой пи­ тательный агар (SNA) как сравнительную среду и следующие штаммы: - V.vulnificus: NCTC 11067 (АТСС 29307); - V.cholerae: не 01-0139 NCTC 8042 (АТСС 14733); - Eschenchia coli: АТСС 25922. 8739 или 11775. Эффективность роста рассчитывают по формуле: (Nc,.c/N sna)-100. где N — количество выросших колоний. Эффективность роста должна составлять по меньшей мере 50 % для любых видов Vibrio и менее 1 % для Е. coli. Колонии V. vulnificus: NCTC 11067 должны быть желтыми окруженными окрашенной желтой зоной среды, в то время как V. cholerae: NCTC 8042 должны быть пурпурными окруженными пурпурными зонами среды. В.5 Модифицированный целлобиозо-лолимиксин-колистин (тСРС) агар В.5.1 1000-кратный красящий раствор В.5.1.1 Состав: бромтимоловый голубой — 4.0 г; крезоловый красный — 4.0 г; этанол. 95% — 100 см3. В.5.1.2 Приготовление Растворяют краски в этаноле для получения 4 %-ного (масса к объему) раствора. Прибавляют 1 см3 этого раствора на дм5 тСРС агара до конечной концентрации 40 мг бромтимолового голубого и 40 мг крезолового красного на дм3. В.5.2 Раствор 1 В 5.2.1 Состав: пептон — 10 п мясной экстракт — 5 г; натрия хлорид — 20 г; 1000-кратный раствор храсителя — 1 см3; агар — 15 г; дистиллированная вода — 900 см3. В.5.2.2 Приготовление Перемешивают компоненты и устанавливают pH 7.6. Охлаждают приблизительно до 50 °С. 8.5.3 Раствор 2 В.5.3.1 Состав целлобиоза — 10 г; колистин — 400000 единиц; полимиксин В — 100000 единиц; дистиллированная вода — 100 см3 В.5.3.2 Приготовление Растворяют целлобиозу в дистиллированной воде при нагревании. Охлаждают приблизительно до 50 С. Добавляют антибиотики и перемешивают. В.5.4 Готовая среда В.5.4.1 Состав: 1000-кратный раствор красителя — 1 см3; Раствор 1 — 900 см3; Раствор 2 — 100 см3. В.5.4.2 Приготовление Прибавляют раствор 2 к раствору 1 и перемешивают. Прибавляют 1 см’ данного раствора на дм3 тСРС агара до конечной концентрации 40 мг бромтимолового голубого и 40 мг крезолового красного на дм3. В.5.5 Приготовление чашек с агаром Наливают в чашки Петри по 15 — 20 см3. Перед использованием подсушивают поверхность агара. 13
ГОСТ ISOfTS 21872-2—2013 В.5.6 Контроль среды Для руководства см. [11. [2]. Для количественной оценки эффективности роста для каждой партии тСРС агара используют солевой пи­ тательный агар (SNA) как сравнительную среду и следующие штаммы: -V . vulnificus: NCTC 11067 (АТСС 29307): - V. cholerae: не О ЪО139 NCTC 8042 (АТСС 14733); - Escherichia coli: АТСС 25922. 8739 или 11775. Эффективность роста рассчитывают по формуле: (N m c^/N ^A ) - 100. где N — количество выросших колоний. Эффективность роста должна составлять по меньшей мере 50 % для каждых видов Vibrio и менее 1 % для Е. coli. Колонии V. vulnificus: NCTC 11067 должны быть желтыми, окруженными окрашенной желтой зоной среды, а V. cholerae: NCTC 8042 — пурпурными, окруженными пурпурными зонами среды. В.6 Солевой питательный агар (SNA) В.6.1. Состав: мясной экстракт — 5.0 г : пептон — 3.0 г; натрия хлорид — 10.0 г; агар — 8-18 г 1' вода — 1 000 см'. В.6.2 Приготовление Растворяют компоненты или дегидратированную основу среды в воде, нагревая при необходимости. Регу­ лируют pH так. чтобы после стерилизации он был на уровне 7,2 ± 0.2 при 25 "С. Разливают среду в емкости подходящей вместимости. Стерилизуют 15 мин в автоклаве при 121 °С. В.6.3 Приготовление чашек с солевым питательным агаром Разливают в стерильные чашки Петри по 15 — 20 cmj среды, охлажденной приблизительно до 50 ®С. Оставляют для застывания. Непосредственно перед применением тщательно подсушивают поверхность агара в чашках (предпочти­ тельнее после снятия крышек и переворачивания чашек). В.6.4 Приготовление пробирок со скошенным агаром Разливают примерно 10 см! среды, охлажденной приблизительно до 5 0 'С. в пробирки подходящей вме­ стимости. Оставляют до застывания в наклонном положении. В.7 Реактив для определения оксидазы В.7.1 Состав: N. N. N'. N- — Теграметил-пара-фенилендиамин дигидрохлорид — 1,0 г вода — 100 см3. В.7.2 Приготовление Растворяют компоненты в холодной воде непосредственно перед использованием. В.8 Солевой трехсахарный железистый агар (TSI) В.8.1 Основная среда В.8.1.1 Состав: пептон — 20.0 г. мясной экстракт — 3.0 г, дрожжевой экстракт — 3.0 г; натрия хлорид — 10,0 г; лактоза — 10.0 г сахароза — 10,0 г; глюкоза — 1.0 г; железо (Si) цитрат — 0.3 г; феноловый красный — 0.024 г; агар — 8-18 г” ; вода — 1000 см3. В.8.1.2 Приготовление Растворяют компоненты или дегидратированную основу среды в воде, нагревая, при необходимости. Если необходимо, регулируют pH так. чтобы после стерилизации он составлял 7.4 ± 0.2 при температуре 25 "С. ” В зависимости от желирующих свойств агара. ''В зависимости от желирующих свойств агара. 14
ГОСТ ISO/TS 21872-2—2013 Разливают среду по 10 cmj в пробирки подходящей вместимости. Стерилизуют 15 мин в автоклаве при температуре 121 СС. Оставляют для застывания в наклонном положении так. чтобы получить столбик высотой 2.5 см. Если среда используется не ранее чем через 8 дней после приготовления, ее регенерируют расплавлени­ ем в кипящей воде или текущим паром в течение 10 мин. Оставляют для застывания, как указано выше. 8.9 Солевая среда для определения орнитин декарбоксилазы (ODC) В.9.1 Состав: L-Орнитин моногидрохлорид — 5.0 г; дрожжевой экстракт — 3.0 г; глюкоза — 1.0 г: бромкрезоловый пурпурный — 0.015 г; натрия хлорид — 10.0 г; вода — 1000 см3. В.9.2 Приготовление Растворяют компоненты в воде, нагревая при необходимости. Если необходимо, регулируют pH так. чтобы он составлял 6.8 ±0.2 при температуре 25 "С. Разливают среду по 2 — 5 см' в узкие пробирки. Стерилизуют 15 мин в автоклаве при температуре 121 °С. В.10 Солевая среда для определения лизин декарбоксилазы (LDC) В.10.1 Состав: L-Лизин моногидрохлорид — 5.0 г; дрожжевой экстракт — 3.0 г; глюкоза — 1,0 г. бромкрезоловый пурпурный — 0.015 г; натрия хлорид — 10.0 г; вода — 1000 см3. В.10.2 Приготовление Растворяют компоненты в воде, нагревая при необходимости. Если необходимо, регулируют pH так. чтобы он составлял 6.8 ± 0.2 при температуре 25 *С. Разливают среду по 2 — 5 см3 в узкие пробирки. Стерилизуют 15 мин в автоклаве при температуре 121 °С. В.11 Солевая среда для определения аргинин дегидроксилазы (ADH) В.11.1 Состав: аргинин моногидрохлорид — 5.0 г; дрожжевой экстракт — 3.0 г, глюкоза — 1,0 г: бромкрезоловый пурпурный — 0.015 г; натрия хлорид — 10.0 г; вода — 1000 см3. В.11.2 Приготовление Растворяют компоненты в воде, нагревая при необходимости. Если необходимо, регулируют pH так. чтобы он составлял 6.8 ± 0.2 при температуре 25 *С. Разливают среду по 2 — 5 см3 в узкие пробирки. Стерилизуют 15 мин в автоклаве при температуре 121 °С. В.12 Реактивы для определения Р-галактозидазы В.12.1 OPNG раствор В.12.1.1 Состав: 2-орто-нитрофенил-Р-0-галактопиранозид (OPNG) — 0,08 г; Вода — 15 см*. В.12.1.2 Приготовление Растворяют OPNG в воде приблизительно при 50 °С, охлаждают раствор. В.12.2 Буферный раствор В.12.2.1 Состав: натрия дигидрофосфат (NaHjPO<) — 6,9 г: натрия гидроксид (NaOH) (раствор 0.1 моль/дм”) — приблизительно 3 см’: вода до конечного обьема -5 0 см*. В. 12.2.2 Приготовление В мерной колбе растворяют дигидрофосфат натрия приблизительно в 45 см3 воды. Регулируют pH до 7.0 ± 0.2 при температуре 25 "С с помощью раствора гидроксида натрия. Доводят объем водой до 50 см’ . В.12.3 Готовый реактив В. 12.3.1 Состав: буферный раствор (В. 12.2) — 5 см3: раствор OPNG (В.12.1) — 15 см*. 15
ГОСТ ISO/TS 21872-2—2013 В.12.3.2 Приготовление Добавляют буферный раствор к раствору OPNG. Хранят при температуре от 0 °С до 5 °С. В.13 Солевая среда для определения индола В.13.1 Триптофановая солевая среда В.13.1.1 Состав: энзиматически переваренный казеин — 10.0 г; DL-Триптофан — 1.0 г; натрия хлорид — 10,0 г; вода — 1000 см8. В.13.1.2 Приготовление Растворяют компоненты в воде, нагревая при необходимости, и фильтруют. Если необходимо, регулируют pH так. чтобы после стерилизации он составлял 7.0 ± 0.2 при температуре 25 *С. Разливают среду по 5 см3 в пробирки подходящей вместимости. Стерилизуют 15 мин в автоклаве при тем­ пературе 121 °С. В.13.2 Реактив Ковача В.13.2.1 Состав: 4-диметиламинобензальдегцд — 5.0 г; соляная кислота (плотностью р = 1,18 г/см -1,19 г/см3) — 25 см3; 2-метилбутан-2-ол — 75 см3. В.13.2.2 Приготовление Смешивают компоненты. В.14 Солевые пептонные воды В.14.1 Состав: пептон — 10.0 п -0. 20. 60. 80 или 100 г; вода — 1000 см3. В.14.2 Приготовление Растворяют компоненты в воде, нагревая при необходимости. Если необходимо, регулируют pH так. чтобы после стерилизации он составлял 7.5 ± 0.2 при температуре 25 ”С. Разливают среду по пробиркам подходящей вместимости. Стерилизуют 15 мин в автоклаве при темпера­ туре 121 °С. В.15 Раствор хлорида натрия В.15.1. Состав: натрия хлорид — 10,0 г; вода — 1000 см3. В.15.2 Приготовление Растворяют компоненты в воде, нагревая при необходимости. Если необходимо, регулируют pH так. чтобы после стерилизации он составлял 7.5 ± 0.2 при температуре 25 "С. Разливают раствор по пробиркам подходящей вместимости. Стерилизуют в течение 15 мин в автоклаве при температуре 121 °С. 16
ГОСТ ISO/TS 21872-2—2013 Приложение ДА (справочное)Сведения о соответствии межгосударственных стандартовссылочным международным стандартам Т а б л и ц а Д А . 1 Обозначение и наименование ссылочного Степень соот­ Обозначение и наименование соответствую­ международного стандарта ветствия щего межгосударственного стандарта ISO 6887-1 Микробиология пищевых продук­ тов и кормов для животных. Приготовление проб для испытаний, исходных суспензий и десятичных разведений для микробиологических исследова­ ний. Часть 1. Общие правила приготовления ис­ ходной суспензии и десятичных разведений ISO 6887-2 Микробиология пищевых продук­ тов и кормов для животных. Подготовка проб, ис­ ходной суспензии и десятикратных разведений для микробиологических исследований. Часть 2. Специальные правила подготовки мяса и мясных продуктов ISO 6887-3 Микробиология пищевых продук­ тов и кормов для животных. Приготовление проб для испытаний, исходных суспензий и десятичных разведений для микробиологических исследова­ ний. Часть 3. Специальные правила для приготов­А ления рыбы и рыбных продуктов ISO 6887-4:2003 Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Приготовление проб для испытаний, исходных суспензий и деся­ тичных разведений для микробиологических ис­ следований. Часть 4. Специальные правила для приготовления продуктов, кроме молока и молоч­ ных продуктов, мяса и мясных продуктов и рыбы и рыбопродуктов ISO 7218 Микробиология пищевых продук­ют ГОСТ ISO 7218 — 2011 Микробиоло­ тов и кормов для животных. Общие требования и гия пищевых продуктов и кормов для жи­ рекомендации по микробиологическим исследова­ вотных. Общие требования и рекоменда­ ниям ции по микробиологическим исследова­ ниям ISO 8261 Молоко и молочные продукты. Общие правила приготовления проб для анализа, исходных суспензий и десятичных разведений для . микробиологических исследований * Соответствующий межгосударственный стандарт отсутствует. До его утверждения рекомендуется ис­ пользовать перевод на русский язык данного международного стандарта. Перевод данного международного стандарта находится в Федеральном информационном фонде технических регламентов и стандартов. Примечание — в настоящей таблице использованы следующие условные обозначения степени соответ­ ствия стандартов: - IDT — идентичные стандарты. 17
ГОСТ ISO TS 21872-2—2013Библиография (1] ISO.TS 11133-1 Microbiology of food and animal feeding stuffs — Guidelines on preparation and production of culture media — Part 1: General guidelines on quality assurance for the preparation of culture media in the laboratory [21 ISO.TS 11133-2 Microbiology of food and animal feeding stuffs — Guidelines on preparation and production of culture media — Part 2: Practical guidelines on performance testing of culture media 18
ГОСТ ISO/TS 21872-2—2013 УДК 543.9:006.354 МКС 07.100.30 ЮТ 65.120 67.050 Ключевые слова: микробиология, пищевые продукты, корма для животных, инкубирование посевов, чашки Петри, колонии, идентификация, определение индола, определение оксидазы. Vibrio fluvialis. Vibrio mimicus. Vibrio vulnificus 19
Подписано в печать 02.10.2014. Формат 60x841/8. Уел. печ. л. 2.79. Тираж 53 экз. Зак. 4114 Подготовлено на основе электронной версии, предоставленной разработчиком стандарта ФГУП «СТАНДАРТИНФОРМ». 123995 Москва. Гранатный пер.. 4. wv

Похожие документы